您好,欢迎来到榕意旅游网。
搜索
您的当前位置:首页质粒小提试剂盒使用说明书

质粒小提试剂盒使用说明书

来源:榕意旅游网
.

质粒小提试剂盒I简明步骤(PD1211)

(详细内容请参考英文说明书)

I.

实验前准备

II.

注意事项

RNase A: 使用前将提供的所有RNase A瞬时离心后加入Buffer A1, 使用后将Buffer A1/RNase A置于4oC保存。

质粒拷贝数:纯化中低拷贝的质粒时,使用2倍的菌液体积,2倍的Buffer A1,B1,N1, 相同体积的Wash

DNA Wash Buffer*: 使用前请将8 mL (PD1211-00)或48 mL Buffer和Elution Buffer.

(PD1211-01)或216 mL (PD1211-02) or 90 mL (PD1211-转化菌:若为-70oC甘油冻存的菌,请先涂布平板培养03) 96-100% 乙醇加入DNA Wash Buffer。 后,再重新挑选新的单个菌落进行培养。 Buffer B1: 在低于室温时会沉淀,请于50oC左右水浴加热至沉淀完全溶解,溶液澄清,使用后保证Buffer B1瓶盖旋紧。 在室温下(22-25oC)进行所有离心操作。

切勿直接取冻存的菌种进行培养。

III. 操作步骤

1. 接种新鲜的单个菌落到1-5 mL的LB培养基(含适量抗生素),37oC震荡培养14-16小时。室温下

10,000 x g离心1分钟,收集菌体,并尽可能的吸去上清。

注:残留的液体培养基容易导致菌液裂解不充分,第5步离心后沉淀较松,不能有效吸取上清。

注:本说明书中的操作程序适用于标准LB (Luria Bertani)培养基培养12-16 小时后,OD600(细菌密度)在2.0-3.0之间的菌液。若采用的是富集培养基,例如TB 或2×YT,请注意保证OD600不超过3.0。

2. 加入250 µL Buffer A1(确保已加入RNase A),用移液或涡流震荡充分悬浮细菌细胞。

注:细菌细胞如果没有充分悬浮均匀,将导致菌体裂解不完全,从而降低产量。

3. 加入 250 µL Buffer B1, 轻轻地反转5-10 次以混合均匀,然后静置2-5分钟至溶液粘稠而澄清。

注:切勿剧烈振荡。静置时间不超过5分钟,时间过长会导致基因组DNA污染或质粒受到损伤。若溶液未清亮澄清,则表明菌体裂解不充分,应加大Buffer B1的用量或减少菌体量。

4. 加入350 µL Buffer N1, 立即反转多次,至溶液充分混匀,此时出现白色絮状沉淀。

5. 将离心管转至高速离心机,在室温下13,000 rpm离心10分钟(若上清中有白色沉淀,可再次离心)。 6. 小心吸取离心后的上清液至带有收集管的DNA柱中(避免吸起沉淀),室温下13000 rpm离心1分

钟,倒掉收集管中的废液,将离心柱重新放回到收集管中。 7. 可选: 向DNA柱中加入 500 µL Buffer KB, 室温下13000 rpm 离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将

离心柱重新放回到收集管中。

注:此步对富含内源核酸酶的宿主菌(endA+)来说是必须的,如HB101, JM101, TG1等;对endA-来说可省

略,如Top 10和DH5a等,请参照英文说明书第3页的表2.

8. 向离心柱中加入500 µL DNA Wash Buffer(确保已加入无水乙醇),室温下,13000 rpm 离心1分

钟,倒掉收集管中的废液,将离心柱重新放回到收集管中。可选步骤:重复步骤“8”。 9. 将离心柱放回高速离心机中,13000 rpm室温下开盖离心2分钟,以彻底去除残留的乙醇。

注:此步骤中开盖离心将会更有效的去除残留的乙醇,乙醇是否去除干净将会影响最后的洗脱效率。

10. 将离心柱转至一个新的1.5 mL离心管中,向DNA柱的正中间加入50~100 µL(体积>50 µL)的

ddH2O(pH在7.0-8.5之间)或Elution Buffer,室温放置2分钟,13000 rpm 离心1分钟,洗脱质粒DNA。

注:提取到的质粒DNA可直接用于基因克隆、测序、酶切、文库筛选、体外转录翻译、转染HEK293细胞。若用于转染内毒素敏感性细胞株,原代细胞及用于微注射,建议去除内毒素(PD1212)。

IV. DNA浓度及纯度

DNA浓度(µg/mL) = OD260 x 50 x 稀释倍数,OD260/ OD280约为1.7-1.9

;.

.

V.

常见问题及解答

1、没有提出质粒或者质粒收获量很低 A、菌种老化:

建议:对于甘油保存的菌种,需要先进行活化。涂布或者划线菌种,重新挑选单菌落进行液体培养,并对菌种进行初摇活化,按照1:500的比例进行菌种培养。二次培养细胞最好不要超过16小时。

B、低拷贝质粒:

建议:如果是由于低拷贝质粒引起的质粒收获量低,可以采用两倍的菌体量,并相应增加各种Buffer的用量,如果必要,更换具有相同功能的高拷贝质粒载体。

C、质粒丢失

✓ ✓

建议:某些质粒在多次继代培养的过程中会出现丢失的现象,另外检查筛选抗生素的浓度是否正确。

建议:如果采用超过推荐量的菌体进行质粒制备,会导致菌体裂解不充分。可适当减少菌体的用量或者相应增大各种Buffer的用量。请根据选取的试剂盒,处理相应量的细菌量。

D、裂解不充分

E、Buffer中有沉淀未溶解

建议:Buffer B1和Buffer N1在温度较低时会出现沉淀,使用前请检查是否有沉淀生成,如有沉淀生成,请置于37oC温育片刻,待溶液澄清后使用。

F、DNA Wash Buffer中未按要求加入乙醇

✓ ✓

建议:按照说明书要求加入要求量的无水乙醇,使用后旋紧瓶盖,防止乙醇挥发。

建议:漂洗后,可适当延长离心时间,已尽量去除残留的乙醇。另外对于质粒中提,大提和超大量提取,建议离心后,将柱子或大漏斗用吹风机冷风吹片刻,以彻底去除残留的乙醇,便于洗脱和后续实验操作。

G、离心柱中乙醇残留 E、洗脱液加入位置不正确,

✓ ✓

建议:洗脱液应加在膜,已取得最好的洗脱效果。

建议:将DNA从柱子上洗脱下来的最适pH值在7.0~8.5之间,如果洗脱液的pH超出此范围将会显著影响洗脱效果,请使用试剂盒配套的Elution Buffer(pH 8.5,10mMTris-HCl)进行洗脱,如果用ddH2O进行洗脱,请确保pH在7.0~8.5之间。

F、洗脱液pH值不正确 G、洗脱体积及时间的选择

建议:洗脱体积将会影响最终的收获量,洗脱体积越大,收获量越高,但是浓度将会降低。请使用试剂盒推荐的洗脱体积进行洗脱,以保证最好的收获量和浓度。如果需要高浓度的质粒,请减少洗脱体积。另外,如果想收获高浓度高收获量的质粒,可进行二次洗脱。 ✓

建议:加入洗脱Buffer后,室温放置2~5分钟,更有利于洗脱。

2、质粒纯度不高

A、蛋白质污染OD260/ OD280<1.7

✓ ✓

建议:选择推荐量的菌体,离心后小心吸取上清,如果上清液中混有悬浮物,可再次离心,以彻底去除蛋白质。

建议:检查配送的RNase A是否完全加入到Buffer A1中,加入RNase A后,Buffer A1/RNase A应该存放在4oC,如果存放时间过长,或者没有正确存放,请重新加入RNase A。

B、RNA污染OD260/ OD280>1.9 C、基因组DNA污染

建议:加入Buffer B1后,轻轻颠倒混匀,避免剧烈震荡涡旋,加入Buffer B1的处理时间最好不要超过5分钟。

3、加样时DNA飘出加样孔外

建议:柱中残留乙醇未除净, 洗脱质粒DNA前确保无乙醇残留在膜上。可再离心或者抽真空。

;.

因篇幅问题不能全部显示,请点此查看更多更全内容

Copyright © 2019- nryq.cn 版权所有 赣ICP备2024042798号-6

违法及侵权请联系:TEL:199 1889 7713 E-MAIL:2724546146@qq.com

本站由北京市万商天勤律师事务所王兴未律师提供法律服务